一、细胞准备
1.推荐细胞系:HEK293T 或 AAV-293
- 要求细胞状态良好、无污染、无过度融合。
2.汇合度 70–85% 最佳
- 太低影响转染效率,太高影响病毒产量。
3.不可使用抗生素!
- 抗生素会影响转染效率和细胞状态。
4.培养基保持新鲜
- 建议转染前 2–4 小时更换新鲜培养基。
二、质粒相关注意事项
1.三质粒系统:Rep/Cap + Helper + GOI 载体(ITR)
- 保证 ITR 完整,否则无法包装。
2.质粒必须高纯、高质量(OD260/280 = 1.8–2.0)
- 内毒素含量低(<10 EU/μg)。
3.质粒比例精准配比
- 常用:1:1:1 或 1:1:2,根据试剂优化。
4.检查 Plasmid 尺寸
- AAV 最大可包装 ≤4.7 kb(含 ITR)。
- 超过会导致滴度显著下降。
三、转染步骤注意事项
- 选择高效转染试剂(PEI、Lipofectamine 3000 等)
- DNA 与转染试剂比例需优化
- 每平方厘米细胞用 DNA 量通常为 1–2 μg。
- 避免产生沉淀(PEI-DNA 若混合不当会出现白色沉淀)
- 转染 6–8 h 后可换液(减少毒性提升产量)
四、病毒表达期管理
1.收毒时间:48–72h(第一次),96h(第二次)
2.注意轻轻吸取病毒液
- 避免扰动细胞,减少杂质。
3.保持 37°C、5% CO₂ 稳定培养
4.确保无细菌、真菌、支原体污染
五、纯化过程注意事项
(适用于 CsCl、PEG、柱纯、梯度离心)
1.避免剪切 AAV 颗粒
- 操作轻柔,使用低蛋白吸附离心管(如 PP 管)。
2.使用无菌、去内毒素试剂及器材
3.建议加入 0.001–0.01% Pluronic F-68 防止黏附
4.梯度离心注意不要扰动病毒层
六、滴度测定注意事项
常用方法:qPCR / ddPCR / ELISA / SDS-PAGE
1.不得使用未经 RNase/DNase 处理的样品
2.保证标准品准确性
3.qPCR/ ddPCR 需使用 ITR 或 Cap 引物(视目的而定)
4.注意区分 vg 与 vp(基因组 vs. 衣壳)
七、病毒保存注意事项
1.不要冻融!
- AAV 冻融会造成滴度下降(10–30%)。
2.建议分装:−80°C 或 −20°C 长期保存
3.使用含 0.001–0.01% Pluronic 的 PBS / HBSS
4.避免玻璃管保存,病毒容易吸附损失
八、常见错误与避免方法
| 错误 | 后果 | 避免方法 |
| 细胞状态不好 | 滴度下降 | 保持活力、对数生长期 |
| ITR 断裂 | 无病毒 | 酶切检测 ITR 完整性 |
| 质粒比例不对 | 滴度低 | 使用优化方案 |
| 培养基带抗生素 | 转染效率低 | 转染期间不用抗生素 |
| 反复冻融 | 滴度损失 | 分装保存 |
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