AAV感染效率低是一个多因素导致的问题,主要原因可以分为以下几个方面:
1. 细胞自身因素
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细胞表面受体表达水平:AAV进入细胞的第一步是结合细胞表面的初级受体(如AAV2需要硫酸肝素蛋白聚糖HSPG)和共受体(如αVβ5整合素、成纤维细胞生长因子受体FGFR1等)。如果目标细胞不表达或低表达这些特异性受体,AAV就无法有效吸附和进入细胞。这是决定细胞嗜性 的关键。
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细胞内吞与胞内运输效率:AAV通过网格蛋白介导的内吞作用进入细胞后,需要经历从早期内体到晚期内体,再到核内体的复杂运输过程。这个过程中,大部分病毒颗粒会被运输到溶酶体并被降解,只有少部分能成功“逃逸”到细胞质中。
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核膜屏障:AAV的基因组需要进入细胞核才能进行转录。AAV的衣壳大小约20-25nm,而核孔复合物的有效直径通常小于10nm。因此,完整的AAV病毒颗粒很难直接通过核孔。它需要依赖核膜上不稳定的“临时孔洞”(如在细胞分裂时或某些特定条件下)或者一个复杂且效率不高的核内体释放和入核机制。
2. 病毒载体因素
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血清型选择不当:不同的AAV血清型(如AAV1, 2, 5, 6, 8, 9等)对不同的组织和细胞具有天然的嗜性差异。例如,AAV9易于穿过血脑屏障感染中枢神经系统,而AAV8对肝脏有高亲和力。如果选择的血清型与目标组织不匹配,感染效率会非常低。
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衣壳免疫原性:虽然AAV的免疫原性远低于腺病毒,但人群中仍普遍存在针对不同AAV血清型的中和抗体。这些抗体可以识别并结合AAV衣壳,在病毒进入目标细胞前就将其清除,从而完全阻断感染。
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病毒滴度不足或质量不佳:制备的病毒原液如果实际感染性滴度(IU/mL)低于理论值,或者在生产纯化过程中病毒衣壳受损,都会直接导致功能性病毒颗粒数量不足,感染效率下降。
3. 细胞内及机体内的限制性因素
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细胞内降解:如上所述,大部分AAV在胞内运输过程中被困在核内体/溶酶体途径中被降解,这是限制感染效率的一个主要“瓶颈”。
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基因组第二链合成(针对部分血清型):某些AAV血清型(如AAV2)的基因组是单链DNA。它进入细胞核后,需要依赖宿主细胞的DNA聚合酶合成第二条互补链,形成双链DNA模板,才能启动基因表达。这个过程效率较低且速度慢,是导致转基因表达延迟和效率降低的重要原因。这也是自我互补型AAV(scAAV)被开发出来的原因,它绕过了这一步骤,能更快、更强地表达基因。
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机体免疫清除:在体内实验中,除了预存的中和抗体,先天免疫系统和细胞免疫系统也会被激活。巨噬细胞等会吞噬和清除血液循环中的AAV颗粒,而细胞免疫(如CD8+ T细胞)可能会攻击和清除那些成功表达了外源转基因的细胞。
总结与对策
为了提高AAV的感染效率,研究人员采取了多种策略:
| 问题根源 | 解决策略 |
| 受体限制 | • 选择合适血清型:根据目标组织选择嗜性最佳的血清型。 |
| • 衣壳工程化改造:通过定向进化或理性设计,改造衣壳蛋白,使其能识别新的受体,增强对特定细胞的靶向性。 | |
| 入核和基因组转换障碍 | • 使用自我互补型AAV(scAAV):绕过第二链合成,提高表达速度和效率。 |
| • 使用高感染复数(MOI):在体外实验中,通过增加病毒颗粒与细胞的数量比来强行提高感染率。 | |
| 细胞内降解 | • 添加辅助药物:在感染时加入组蛋白去乙酰化酶抑制剂(如VPA)或蛋白酶体抑制剂(如Bortezomib),可以抑制病毒基因组在核内的沉默或减少其在胞内的降解。 |
| 免疫清除 | • 血清型筛选:选择患者体内预存中和抗体率较低的血清型。 |
| • 空壳病毒去除:在生产过程中尽可能去除不含基因组的“空壳”病毒颗粒,因为它们会无效消耗抗体和受体。 | |
| • 使用免疫抑制剂:在临床治疗中短期使用免疫抑制剂来控制T细胞反应。 |
AAV感染效率低是一个系统性问题,需要从病毒载体设计(衣壳、基因组)、目标细胞特性、以及体内外环境等多个层面进行综合分析和优化。
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