AAV 和慢病毒在细胞产毒(病毒产生与释放)阶段,最大的本质区别在于病毒是否主动释放到培养上清中。这一点直接决定了收毒方式、操作流程和产量评估方法。
慢病毒主要释放在培养上清中;AAV 绝大部分滞留在细胞内,需要裂解细胞才能获得高滴度病毒。
关键区别对比(产毒阶段)
| 项目 | AAV | 慢病毒(Lentivirus) |
| 是否包膜 | ❌ 无包膜 | ✅ 有包膜 |
| 病毒释放方式 | ❌ 不主动释放 | ✅ 出芽式主动释放 |
| 病毒主要位置 | 细胞内(80–90%) | 培养上清 |
| 是否必须裂解细胞 | 是(关键步骤) | 否 |
| 收毒方式 | 裂解细胞 + 上清合并 | 直接收集上清 |
| 收毒时间点 | 转染后 48–72 h | 48 h、72 h 多次 |
| 对细胞状态依赖 | 中后期即可 | 需维持良好活性 |
| 下游纯化难度 | 较高(杂质多) | 相对较低 |
AAV:为什么必须裂解细胞?
原因在于 AAV 的生物学特性:
1.无包膜病毒
- 不通过出芽释放
- 不具备高效主动分泌机制
2.衣壳组装在细胞内完成
- AAV 基因组装配后滞留于细胞核/胞浆
3.自然释放效率极低
- 上清中通常只有 <10–20% 的病毒
📌 结论:不裂解细胞 → AAV 滴度严重偏低,数据失真
慢病毒:为什么不需要裂解细胞?
因为慢病毒是典型的包膜病毒:
1.出芽释放
- 在细胞膜处组装并释放
- 病毒自然进入培养上清
2.裂解细胞反而有害
- 会释放大量细胞碎片
- 降低病毒感染活性
- 增加下游过滤和毒性风险
📌 结论:慢病毒只收上清,裂解细胞是“错误操作”
常见误区提醒
❌ “AAV 和慢病毒产毒流程差不多”
→ 错,收毒逻辑完全相反
❌ “慢病毒也可以裂解细胞提高产量”
→ 错,会显著降低功能滴度
❌ “只收 AAV 上清也够用”
→ 通常滴度偏低,不适合科研/动物实验
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