aav和慢病毒在细胞产毒时候最大的区别

2025年12月19日
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AAV 和慢病毒在细胞产毒(病毒产生与释放)阶段,最大的本质区别在于病毒是否主动释放到培养上清中。这一点直接决定了收毒方式、操作流程和产量评估方法

慢病毒主要释放在培养上清中;AAV 绝大部分滞留在细胞内,需要裂解细胞才能获得高滴度病毒。

关键区别对比(产毒阶段)

项目 AAV 慢病毒(Lentivirus)
是否包膜 ❌ 无包膜 ✅ 有包膜
病毒释放方式 ❌ 不主动释放 ✅ 出芽式主动释放
病毒主要位置 细胞内(80–90%) 培养上清
是否必须裂解细胞 是(关键步骤)
收毒方式 裂解细胞 + 上清合并 直接收集上清
收毒时间点 转染后 48–72 h 48 h、72 h 多次
对细胞状态依赖 中后期即可 需维持良好活性
下游纯化难度 较高(杂质多) 相对较低

AAV:为什么必须裂解细胞?

原因在于 AAV 的生物学特性:

1.无包膜病毒

  • 不通过出芽释放
  • 不具备高效主动分泌机制

2.衣壳组装在细胞内完成

  • AAV 基因组装配后滞留于细胞核/胞浆

3.自然释放效率极低

  • 上清中通常只有 <10–20% 的病毒

📌 结论:不裂解细胞 → AAV 滴度严重偏低,数据失真

慢病毒:为什么不需要裂解细胞?

因为慢病毒是典型的包膜病毒:

1.出芽释放

  • 在细胞膜处组装并释放
  • 病毒自然进入培养上清

2.裂解细胞反而有害

  • 会释放大量细胞碎片
  • 降低病毒感染活性
  • 增加下游过滤和毒性风险

📌 结论:慢病毒只收上清,裂解细胞是“错误操作”

常见误区提醒

“AAV 和慢病毒产毒流程差不多”
→ 错,收毒逻辑完全相反

“慢病毒也可以裂解细胞提高产量”
→ 错,会显著降低功能滴度

“只收 AAV 上清也够用”
→ 通常滴度偏低,不适合科研/动物实验

关于派真

作为一家专注于AAV 技术十余年,深耕基因治疗领域的CRO&CDMO,派真生物可提供从载体设计、构建到 AAV、慢病毒和 mRNA 服务的一站式解决方案。凭借深厚的技术实力、卓越的运营管理和高标准的服务交付,我们为全球客户提供一站式CMC解决方案,包括从早期概念验证、成药性评估到IITINDBLA的各个阶段。

 

凭借我们独立知识产权的π-alphaTM 293 细胞AAV高产技术平台,我们能将AAV产量提高多至10倍,每批次产量可达1×10¹⁷vg,以满足多样化的商业化和临床项目需求。此外,我们定制化的mRNA和脂质纳米颗粒(LNP)产品及服务覆盖药物和疫苗开发的各个阶段,从研发到符合GMP的生产,提供端到端的一站式解决方案。

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