在腺相关病毒(AAV)制备过程中,超速离心(CsCl 或 Iodixanol 梯度)是最常用的纯化手段之一。该方法基于颗粒密度差异对病毒进行分离,通常可在离心管中观察到清晰的条带。
需要注意的是,条带并不等同于“全部为有效 AAV 病毒”。在目标条带及其相邻区域中,往往还会存在多种非理想成分。
一、条带中最常见的杂质类型
1. 空壳 AAV(Empty capsid)
空壳 AAV 是超速离心条带中最常见的杂质。
其结构与完整 AAV 相同,仅由衣壳蛋白组成,但不含任何病毒基因组。由于密度略低,空壳通常与完整病毒形成相邻条带,甚至在部分体系中出现重叠。
空壳 AAV 的主要问题在于:
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无法表达目的基因
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占据感染位点,降低有效转导效率
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在 in vivo 实验中可能增加免疫反应风险
2. 部分包装 AAV(Partial genome particles)
部分包装 AAV 指病毒中装载的是不完整或截短的基因组片段。
该类颗粒常见于:
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转基因长度接近或超过 AAV 包装上限
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ITR 结构异常或发生重组
在检测中,这类病毒往往表现为:
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qPCR 滴度不低
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实际功能表达明显偏低
因此,仅依赖滴度数据,容易高估病毒的实际有效性。
3. 错误包装 DNA(Mis-packaged DNA)
在 AAV 装配过程中,除目标基因组外,病毒衣壳偶尔会误包装其他 DNA 片段,包括:
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质粒骨架序列
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宿主细胞基因组 DNA
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helper plasmid 相关片段
这类杂质在密度上可能接近完整 AAV,难以仅通过条带位置区分。在体内实验或临床前研究中,错误包装 DNA 被认为存在潜在的生物安全风险。
二、非条带型但常伴随存在的杂质
4. 宿主细胞蛋白(HCP)
尽管经过超速离心纯化,仍可能残留少量宿主细胞蛋白。这些蛋白:
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通常不形成清晰条带
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可能吸附在 AAV 表面
残留 HCP 会影响病毒纯度,尤其在高要求应用场景中需要重点关注。
5. 游离核酸(DNA / RNA)
若细胞裂解或核酸酶处理不充分,游离核酸可能残留于样品中,导致:
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梯度粘度升高
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条带模糊或拖尾
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滴度检测准确性下降
三、不同超速离心体系的条带分布特点
Iodixanol 梯度体系
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15%–25%:蛋白碎片及轻杂质
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25%–40%:以空壳 AAV 为主
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40%–60% 交界处:主要为完整 AAV(目标条带)
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60% 以下:重杂质或聚集体
CsCl 梯度体系
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可更精细地区分空壳、部分包装及完整 AAV
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但操作周期较长,且可能对病毒活性产生一定影响
四、AAV 条带质量的综合判断建议
在实际应用中,不建议仅凭条带是否清晰来判断 AAV 质量。更可靠的评估方式应结合:
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病毒基因组滴度(vg)
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衣壳总量或 vg/capsid 比值
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体外转导或 in vivo 表达效果
总结
AAV 超速离心条带中最主要的杂质来源于空壳病毒和异常包装颗粒。条带只能反映颗粒密度分布,并不能直接代表病毒的功能有效性。只有结合定量检测与功能验证,才能全面评估 AAV 的真实质量。
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