知识分享

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aav辅助质粒的作用

AAV辅助质粒(AAV helper plasmid)是用于腺相关病毒(AAV)生产和包装的重要工具,其主要作用是提供AAV复制和包装所需的辅助因子。这些因子通常由腺病毒(Adenovirus)天然提供,但通过使用AAV辅助质粒,可以在无腺病毒的情况下实现AAV载体的生产,降低病毒污染的风险。 具体作用 1.提供腺病毒辅助基因: AAV本身无法独立复制,需要依赖腺病毒的辅助基因来完成其生命周期。辅助质粒通常携带关键的腺病毒基因,如 E2A、E4 和 VA RNA,这些基因能够激活AAV基因组的复制和包装。...

哪种血清型的AAV对肝脏感染最有效?

腺相关病毒(AAV)的血清型选择对于靶向不同组织(如肝脏)具有重要影响。对于肝脏感染,以下几种AAV血清型通常被认为最有效: 1.AAV8 AAV8 是目前广泛用于肝脏靶向的血清型之一。它具有高度的肝脏亲和性和较低的免疫反应性,同时在体内表现出较高的基因转导效率。 2.AAV9 AAV9 也显示出良好的肝脏转导能力,并且能够跨越血脑屏障,适用于需要全身递送的情况。 3.AAV2 虽然 AAV2 是最早被研究的血清型,且具有一定的肝脏转导能力,但其转导效率通常低于 AAV8 和 AAV9。不过,通过工程化改造,AAV2...

如何提高AAV感染动物效率

提高腺相关病毒(AAV)感染动物的效率可以从以下几个方面入手,主要是优化实验设计、病毒生产、注射方法和后续管理: 1. 选择合适的AAV血清型 不同的AAV血清型对不同组织和细胞的感染效率不同。选择合适的血清型可以显著提高感染效率: AAV9:用于全身感染、心脏和神经系统。 AAV8:对肝脏感染效率高。 AAV2:广泛用于神经元和体外研究。 AAV-DJ:融合型血清,适合多组织高效感染。 建议:根据目标组织和实验目的选择最佳的血清型。 2. 优化病毒载体设计 启动子:选择能高效表达目标基因的启动子(如...

AAV感染后过表达效果弱

AAV感染后出现过表达效果弱的问题可能由多个因素导致,可以从以下几个方面进行排查和优化: 1. 病毒质量问题 (1)病毒滴度不足:检查病毒制备时的滴度(GC/mL或VG/mL),过低的滴度会导致感染效率低下。 解决方案:制备更高滴度的病毒或增加注射量。 (2)病毒纯度不够:杂质可能影响感染效率。 解决方案:优化纯化方法(如CsCl梯度离心或FPLC)确保病毒纯净度。 (3)病毒失活:冷冻/解冻次数过多或储存条件不当可能导致病毒活性下降。 解决方案:分装后储存于-80℃,避免反复冻融。 2. 组织靶向性...

AAV在动物体内表达需要注意哪些关键点

在使用腺相关病毒(AAV)载体在动物体内表达目的基因时,需要注意以下关键点: 1. AAV载体选择 血清型选择:AAV有多个血清型(如AAV1至AAV9及AAVrh系列),不同血清型具有不同的组织嗜性。例如: AAV9:对中枢神经系统和心脏有高效传染能力。 AAV8:常用于肝脏靶向。 AAV5:对呼吸道和中枢神经系统有效。 根据实验需求选择适合的血清型以提高靶向性。 启动子选择: 使用合适的启动子可以控制目的基因的表达模式(组织特异性或全局表达)。...

不同的AAV血清型主要区别是什么

腺相关病毒(AAV)血清型的主要区别体现在以下几个方面: 1. 衣壳蛋白序列和结构 不同的AAV血清型具有不同的衣壳蛋白(VP1、VP2、VP3)序列,这直接决定了衣壳的表面结构。 衣壳蛋白序列的变化影响病毒与宿主细胞受体的结合,从而影响其细胞和组织特异性。 2. 宿主受体识别 不同的AAV血清型通过识别不同的细胞表面受体进入细胞。例如: AAV2:与肝素硫酸糖胺聚糖结合。 AAV5:识别唾液酸。 AAV9:通过糖基化受体与细胞结合。 这种差异决定了血清型在体内的组织特异性和感染效率。 3. 组织嗜性(Tropism)...

AAV感染动物后,为什么会观察不到荧光或荧光微弱

在使用腺相关病毒(AAV)载体感染动物后,观察不到荧光或荧光微弱可能与以下几个因素有关: 1. 病毒滴度不足 AAV的感染效率与病毒的滴度密切相关。如果注射的病毒滴度过低,可能导致靶组织或细胞中表达的荧光蛋白量不足,从而荧光信号较弱或不可见。 2. 感染效率问题 靶细胞类型:不同的AAV血清型对不同的细胞和组织有特异性。例如,某些血清型对神经细胞有高亲和力,而对其他细胞可能不高。 递送方式:注射部位(如局部注射、尾静脉注射)和方法可能会影响病毒的分布与感染效率。 屏障问题:如血脑屏障可能限制病毒进入中枢神经系统。 3....

长期保存的病毒使用前需要重新检测吗?

是的,长期保存的病毒在使用前通常需要重新检测。这是因为病毒在长期保存过程中可能会受到以下因素的影响: 1.活性降低:病毒在保存过程中可能因保存条件(如温度、湿度、保存介质的质量)而逐渐失去活性或感染能力。 2.污染风险:如果保存过程中发生了意外(如保存容器泄漏或灭菌失败),病毒可能受到其他微生物或化学物质的污染。 3.遗传变异:某些病毒可能在长期保存期间发生遗传变异,导致其特性(如感染力或抗原性)发生变化。 4.保存条件变化:保存环境的波动(如冷冻设备故障、温度升高等)可能会影响病毒的稳定性。...

慢病毒纯化后,如何确保其长期保存?

慢病毒(Lentivirus)纯化后,为确保其长期保存并维持活性,可以采取以下措施: 1.分装保存 将纯化后的慢病毒分装到小体积的冻存管中,这样可以减少反复冻融的次数,避免降低病毒滴度。 2.避免反复冻融 反复冻融会降低病毒滴度,每次冻融可能会降低病毒滴度10%左右。因此,应尽量避免反复冻融,并根据每次的使用量对病毒进行分装。 3.短期保存 如果在短时间内(一周内)使用慢病毒,可以将病毒置于4℃保存。 4.长期保存 对于需要长期保存的慢病毒,建议将病毒分装后放置于-80℃。 5.使用封口膜封口...

慢病毒纯化的要点

慢病毒纯化是慢病毒载体研究和生产的重要环节,保证其高滴度和高纯度对后续实验和应用至关重要。以下是慢病毒纯化的关键要点: 1. 病毒收集 时间选择:慢病毒通常在转染后48-72小时达到最高滴度,需在此时间段内收集培养基。 收集次数:可以多次收集上清液(如48小时和72小时),以提高总产量。 离心去杂质:初步去除细胞碎片和杂质,通常以低速离心(如1500-2000 rpm,10分钟)清除细胞残留。 2. 过滤 孔径选择:使用0.45 μm或0.22 μm滤膜过滤培养上清液,以进一步去除较大的颗粒和细胞碎片。...

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